京都大学大学院
生命科学研究科 分子動態生理学
医学研究科 神経・細胞薬理学
渡邊研究室

Publications

Articles

    2023

  • Yamashiro, S., Rutkowski, D.M., Lynch, K.A., Liu, Y., Vavylonis, D. and Watanabe, N. Force transmission by retrograde actin flow-induced dynamic molecular stretching of Talin. Nat. Commun. 14: 8468 (2023). doi.org/10.1038/s41467-023-44018-z
  • Zhang, Q., Miyamoto, A. and Watanabe, N. Protocol to generate fast-dissociating recombinant antibody fragments for multiplexed super-resolution microscopy. STAR Protocols 4: 102523 (2023). doi: 10.1016/j.xpro.2023.102523
  • Watanabe, N. Brownian ratchet force sensor at the contacting point between F-actin barbed end and lamellipodium tip plasma membrane. “Plasma Membrane Shaping” Elsevier 295-306 (2023). doi: 10.1016/B978-0-323-89911-6.00015-7
  • 2022

  • Zhang, Q., Miyamoto, A., Watanabe, S., Arimori, T., Sakai, M., Tomisaki, M., Kiuchi, T., Takagi, J. and Watanabe, N. Engineered fast-dissociating antibody fragments for multiplexed super-resolution microscopy. Cell Reports Methods 2: 100301 (2022). doi: 10.1016/j.crmeth.2022.100301
  • Holz, D., Hall, A.R., Usukura, E., Yamashiro, S., Watanabe, N. and Vavylonis, D. A mechanism with severing near barbed ends and annealing explains structure and dynamics of dendritic actin networks. eLife 11: e69031 (2022). doi: 10.7554/eLife.69031
  • 2021

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  • Miyoshi, T., Zhang, Q., Miyake, T., Watanabe, S.,Ohnishi, H.,Chen, J., Vishwasrao, H.D., Chakraborty, O., Belyantseva, I.A., Perrin, B.J., Shroff, H., Friedman, T.B., Omori, K. and Watanabe, N. Semi-automated single-molecule microscopy screening of fast-dissociating specific antibodies directly from hybridoma cultures. Cell Rep. 34: 108708 (2021). doi: 10.1016/j.celrep.2021.108708
  • 2020

  • Thumkeo, D., Katsura, Y., Nishimura, Y., Kanchanawong, P., Tohyama, K., Ishizaki, T., Kitajima, S., Takahashi, C., Hirata, T., Watanabe, N., Krummel, M. F. and Narumiya, S. mDia1/3-dependent actin polymerization spatiotemporally controls LAT phosphorylation by Zap70 at the immune synapse.Science Advances 6: eaay2432 (2020). doi: 10.1126/sciadv.aay2432
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  • 2019

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  • 2018

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  • Sakamoto, S., Thumkeo, D., Ohta, H., Zhang, Z., Huang, S., Kanchanawong, P., Fuu, T., Watanabe, S., Shimada, K., Fujihara, Y., Yoshida, S., Ikawa, M., Watanabe, N., Saitou, M. and Narumiya, S. mDia1/3 generate cortical F-actin meshwork in Sertoli cells that is continuous with contractile F-actin bundles and indispensable for spermatogenesis and male fertility. PLoS Biol. 16: e2004874 (2018). doi: 10.1371/journal.pbio.2004874.
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  • 2017

  • Ryan, G.L., Holz, D., Yamashiro, S., Taniguchi, D., Watanabe, N. and Vavylonis, D. Cell protrusion and retraction driven by fluctuations in actin polymerization: A two-dimensional model. Cytoskeleton (Hoboken) 74: 490-503 (2017). doi: 10.1002/cm.21389.
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  • Yamashiro, S.. and Watanabe, N.. An infrared actin probe for deep-cell electroporation-based single-molecule speckle (eSiMS) microscopy. Sensors (Basel) 17: E1545 (2017). doi: 10.3390/s17071545.
  • 2016

  • Ueyama, T., Nishio, S., Miyoshi, T., Torii, H., Nishimura, K., Sugahara, K., Sakata, H., Thumkeo, D., Sakaguchi, H., Watanabe, N., Usami, S., Saito, N. and Kitajiri, S. Constitutive activation of DIA1 (DIAPH1) via C-terminal truncation causes human sensorineural hearing loss. EMBO Mol. Med. 8: 1310-1324 (2016).
  • 2015

  • Kiuchi, T., Higuchi, M., Takamura, A., Maruoka, M. and Watanabe, N. Multitarget super-resolution microscopy with high-density labeling by exchangeable probes. Nat. Methods 12: 743-746 (2015). doi: 10.1038/nmeth.3466.
  • Yamashiro, S., Mizuno, H.. and Watanabe, N. An easy-to-use single-molecule speckle microscopy enabling nanometer-scale flow and wide-range lifetime measurement of cellular actin filaments. Methods Cell Biol. 125: 43-59 (2015).
  • 2014

  • Yamashiro, S. and Watanabe, N. A new link between the retrograde actin flow and focal adhesions. (JB Review) J. Biochemistry 156: 239-248 (2014)
  • Kiuchi, T., Ortiz-Zapater, E., Monypenny, J., et al. The ErbB4 CYT2 variant protects EGFR from ligand-induced degradation to enhance cancer cell motility. Science Signaling 7: ra78 (2014).
  • Yamashiro, S., Mizuno, H., Smith, M. B., Ryan, G. L., Kiuchi, T. Vavylonis, D. and Watanabe, N. New single-molecule speckle microscopy reveals modification of the retrograde actin flow by focal adhesions at nanometer scales. Mol. Biol. Cell 125: 43-59 (2014).
  • Mizuno, H. and Watanabe, N. Rotational movement of formins evaluated by using single-molecule fluorescence polarization. Meth. Enzymol. 540: 73-94 (2014)
  • 2013

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  • Miyoshi, T. and Watanabe, N. Can filament treadmilling alone account for the F-actin turnover in lamellipodia? Cytoskeleton (Hoboken) 70: 179–190 (2013)
  • Smith, M.B., Kiuchi, T., Watanabe, N. and Vavylonis, D. Distributed actin turnover in the lamellipodium and FRAP kinetics. Biophys. J. 104: 247-257 (2013)
  • Ryan, G. L., Watanabe, N. and Vavylonis, D. Image analysis tools to quantify cell shape and protein dynamics near the leading edge. Cell Struct. Funct. 38: 1-7 (2013)
  • 2012

  • Watanabe, N. Fluorescence single-molecule imaging of actin turnover and regulatory mechanisms. Meth. Enzymol. 505, 219-232 (2012)
  • Koizumi, K., Takano, K., Kaneyasu, A., Watanabe-Takano, H., Tokuda, E., Abe, T., Watanabe, N., Takenawa, T. and Endo, T. RhoD activated by fibroblast growth factor induces cytoneme-like cellular protrusions through mDia3C. Mol. Biol. Cell 23: 4647-4661 (2012).
  • Mizuno, H. and Watanabe, N. mDia1 and formins: screw cap of the actin filament. (Review) Biophysics, 8: 95-102 (2012)
  • Murata, K., Kitaori, T., Oishi, S., Watanabe, N., Yoshitomi, H., Tanida, S., Ishikawa, M., Kasahara, T., Shibuya, H., Fujii, N., Nagasawa, T., Nakamura, T. and Ito, H. Stromal cell-derived factor 1 regulates the actin organization of chondrocytes and chondrocyte hypertrophy. PLoS ONE 7: e37163 (2012).
  • Ryan, G. L., Petroccia, H. M., Watanabe, N. and Vavylonis, D. Excitable actin dynamics in lamellipodial protrusion and retraction. Biophys. J. 102: 1493-1502 (2012)
  • Ryan, G. L., Watanabe, N. and Vavylonis, D. A review of models of fluctuating protrusion and retraction patterns at the leading edge of motile cells. (Review) Cytoskeleton (Hoboken) 69: 195-206 (2012).
  • Millius, A., Watanabe, N. and Weiner, O.D. Diffusion, capture, and recycling of SCAR/WAVE and Arp2/3 complexes observed in cells with single-molecule imaging. J. Cell Sci. 125: 1165-1176 (2012).
  • Sakamoto, S., Ishizaki, T., Okawa, K., Watanabe, S., Arakawa, A., Watanabe, N. and Narumiya, S. Liprin-α controls stress fiber formation by binding to mDia and regulating its membrane localization. J. Cell Sci. 125: 108-120 (2012).
  • Maruoka, M., Sato, M., Yuan, Y., Ichiba, M., Fujii, R., Ogawa, T., Ishida-Kitagawa, N., Takeya, T. and Watanabe, N. Abi-1-bridged tyrosine phosphorylation of VASP by Abelson kinase impairs association of VASP to focal adhesions and regulates leukemic cell adhesion. Biochem. J. 441: 889-899 (2012).
  • 2011

  • Sato, Y., Watanabe, N., Fukushima, N., Mita, S. and Hirata, T. Actin-independent behavior and membrane deformation exhibited by the four-transmembrane protein M6a. PLoS ONE 6: e26702 (2011).
  • Kiuchi, T., Nagai, T., Ohashi, K., Watanabe, N. and Mizuno, K. Live-cell imaging of G-actin dynamics using sequential FDAP. (review) Bioarchitecture 1, 1-5 (2011)
  • Smith, M.B., Karatekin, E., Gohlke, A., Mizuno, H., Watanabe, N. and Vavylonis, D. Interactive, computer-assisted tracking of speckle trajectories in fluorescence microscopy: application to actin polymerization and membrane fusion. Biophys. J. 101: 1794-1804 (2011).
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  • Mizuno, H., Higashida, C., Yuan, Y., Ishizaki, T., Narumiya, S. and Watanabe, N. Rotational movement of the formin mDia1 along the double helical strand of an actin filament. Science, 331: 80-83 (2011).
  • 2010 and before (selected)

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  • Monypenny, J., Zicha, D., Higashida, C., Oceguera-Yanez, F., Narumiya, S. and Watanabe, N. Cdc42 and Rac family GTPases regulate mode and speed but not direction of primary fibroblast migration during PDGF-dependent chemotaxis. Mol. Cell. Biol. 29: 2730-2747 (2009).
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  • Higashida, C., Suetsugu, S., Tsuji, T., Monypenny, J., Narumiya, S. and Watanabe, N. G-actin regulates rapid induction of actin nucleation by mDia1 to restore cellular actin polymers. J. Cell Sci. 121: 3403-3412 (2008).
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  • Miyoshi T, Tsuji T, Higashida C, Hertzog M, Fujita A, Narumiya S, Scita G, Watanabe N. Actin turnover-dependent fast dissociation of capping protein in the dendritic nucleation actin network: evidence of frequent filament severing. J. Cell Biol. 175: 947-955 (2006).
  • Watanabe, N. and Higashida, C. Formins: Processive cappers of growing actin filaments. (Review) Exp. Cell Res. 301: 16-22, (2004)
  • Higashida C. Miyoshi T., Fujita A., Oceguera-Yanez F., Monypenny J., Andou Y., Narumiya S. and Watanabe N. Actin polymerization-driven molecular movement of mDia1 in living cells. Science 303: 2007-2010 (2004).
  • Watanabe N. and Mitchison T.J. Single-molecule speckle analysis of actin filament turnover in lamellipodia. Science 295: 1083-1086 (2002)
  • Kato, T., Watanabe, N., Morishima, Y., Fujita, A., Ishizaki, T. and Narumiya, S. Localization of a mammalian homolog of diaphanous, mDia1, to the mitotic spindle in HeLa cells. J. Cell Sci. 114: 775-784 (2001).
  • Watanabe N, Kato T, Fujita A, Ishizaki T, Narumiya S. Cooperation between mDia1 and ROCK in Rho-induced actin reorganization. Nat. Cell Biol. 1: 136-143 (1999)
  • Watanabe, N., Madaule, P., Reid, T., Ishizaki, T., Watanabe, G., Kakizuka, A., Saito, Y., Nakao, K., Jockusch, B.M. and Narumiya, S. p140mDia, a mammalian homolog of Drosophila diaphanous, is a target protein for Rho small GTPase and is a ligand for profilin. EMBO J. 16: 3044-3056 (1997).

Books and other publications

  • Narumiya, S. and Watanabe, N. Migration without a clutch. (News and Views) Nat. Cell Biol. 11: 1394-1396 (2009)
  • Watanabe, N. and Higashida, C. A possible role of homeostasis between monomeric and filamentous actin in filament nucleation revealed by pharmacokinetic modeling. Systems Biology The Challenge of Complexity. Springer 143-149 (2009)
  • 山城佐和子(2023) 好きなことを仕事にする(キャリアデザイン談話室) 生物物理 第63巻 第1号 43-44 https://doi.org/10.2142/biophys.63.43
  • 渡邊直樹,清末優子 (2019) 阻害剤・活性化剤ハンドブック 第32章 細胞骨格・細胞分裂関連薬剤① アクチン細胞骨格系 羊土社
  • 渡邊直樹 監訳(翻訳一部担当) (2018) Rang & Dale’s Pharmacology, 8th edition 日本語版 エルゼビア・ジャパン
  • 渡邊直樹 他(共著) (2018) 細胞骨格~動的な形態制御のメカニズム フロンティア生命科学 4章 4.2節 52-58 および 63-65
  • 渡邊直樹 (2014)Timothy J. Mitchison 細胞骨格研究の偉大なジーク 実験医学(羊土社) 第32巻 第3号 469-472
  • 渡邊直樹 (2008)細胞という名の小宇宙(巻頭言) 細胞生物 第19巻 第178号 April & May http://www.jscb.gr.jp/jscb/preface/preface.html?vol_id=118&no=1&id=16
  • 渡邊直樹 (2007)アクチン細胞骨格のダイナミクスの可視化非侵襲・可視化技術ハンドブック-ナノ・バイオ・医療から情報システムまで- (共著) NTS出版 第8章 第10節 843-850
  • 渡邊直樹 (2005)細胞の中を分子でのぞく-Less is moreとSerendipity- 学術月報 第58巻 第5号 389-391
  • 渡邊直樹,成宮周 (1996)Rhoファミリー蛋白質新臨床医のための分子医学シリーズ 細胞内情報伝達のしくみ (宇井理生編:共著) 羊土社

Review Articles in Japanese

  • 渡邊直樹 (2023) 阻害薬による標的キナーゼの構造的活性化とがん増殖シグナルの誘発 生体の科学 第74巻 第4号 332-335
  • 宮本章歳渡邊直樹 (2023) 多重高密度超解像顕微鏡IRISによる多分子複合体マッピングの病理診断への応用 Precision Medicine(北隆館) 第6巻 第8号 33-37
  • 渡邊直樹 (2023) ブラウンラチェットを介する力の受容器ラメリポディア 生物物理 第63巻 第3号 143-147 doi: 10.2142/biophys.63.143
  • 山城佐和子渡邊直樹 (2022) ミオシン張力によるアクチン線維安定化の細胞内蛍光単分子イメージング解析 BIO Clinica(北隆館) 第37巻 第11号 84-88
  • 山城佐和子渡邊直樹 (2021) 細胞内蛍光単分子イメージングによるミオシン張力依存的なアクチン線維安定化の証明 生体の科学(医学書院) 第72巻 第3号 234-238  doi: 10.11477/mf.2425201354
  • 渡邊直樹山城佐和子 (2020) アクチンネットワークを駆け巡る力学作用の分子可視化 生化学 第92巻 第1号 84‒93 doi:10.14952/SEIKAGAKU.2020.920084
  • 山城佐和子渡邊直樹 (2019) 蛍光単分子イメージングが解き明かすミオシン張力によるアクチン線維安定化 Medical Science Digest 第45巻 第7号 434‒437
  • 渡邊直樹木内泰 (2017) 多重染色・高密度標識で従来法の壁を超えるIRIS超解像顕微鏡法  生体の科学 第68巻 第5号 380-381
  • 木内泰渡邊直樹 (2016) 超解像顕微鏡法IRISの開発による無制限多重染色と高精細な画質の実現 感染 免疫 炎症 第46巻 第2号 34-45
  • 木内泰渡邊直樹 (2016) 高密度・多重染色超解像顕微鏡法IRISの原理と実践 生体の科学 第67巻 第3号 270-276
  • 山城佐和子渡邊直樹 (2015) 細胞骨格(アクチン系) 生体の科学 第66巻 第5号 504-505
  • 小関和馬渡邊直樹 (2014)単分子スペックル(SiMS)顕微鏡が解明したアクチン重合制御 生体の科学 第65巻 第5巻(増大特集 生命動態システム科学) 396-397
  • 渡邊直樹山城佐和子水野裕昭, (2014) 細胞内蛍光単分子イメージングが解き明かす生命の動的なしくみ インナービジョン 第29巻 第7号 42-44
  • 渡邊直樹木内泰 (2013) 蛍光単分子可視化と他の分子動態解析法の融合による細胞内アクチン重合機構の解明 顕微鏡 第48巻 第2号 84-89
  • 渡邊直樹(2013) アクチン線維の物理ストレス制御とフォルミンファミリーによる線維回生 生化学 第85巻 第8号 687-691
  • 渡邊直樹水野裕昭 (2012) フォルミンタンパク質のアクチン二重螺旋に沿った回転重合 化学と生物 第50巻 第11号 801‐806
  • 山城佐和子圓岡真宏水野裕昭渡邊直樹 (2012) アクチン研究の最新動向 ―構造から調節,恒常性,可視化,モデリングまで 実験医学 第30巻 第18号 2998-3005
  • 水野裕昭, 渡邊直樹 (2011) 哺乳動物フォルミンmDia1の回転運動の細胞骨格への役割 生物物理 Vol. 51, No. 5 pp.218
  • 渡邊直樹,水野裕昭 (2011) アクチン線維の二重らせん鎖にそったフォルミンmDia1の回転運動 ライフサイエンス新着論文レビュー http://first.lifesciencedb.jp/archives/1896
  • 木下専,渡邊直樹 (2007) 生理活性物質のケミカルバイオロジーを開拓した論文Mayer, T. U. et al.: Science 286, 971-974 (1999) 蛋白質 核酸 酵素 2007年10月増刊 第52巻 第13号 1796-1799
  • 渡邊直樹 (2007) アクチン重合システムを解く分子イメージング:みえない脱重合反応をとらえる 分子細胞治療 第6巻 第4号 77-82
  • 辻貴宏,渡邊直樹 (2007) 単分子イメージングが明らかにした生細胞内アクチン重合機構 日本臨床 第65巻 第2号 235-241
  • 渡邊直樹(2006) 単分子スペックル顕微鏡によるアクチンダイナミックス観察 実験医学 第24巻 第13号増刊 形と運動を司る細胞のダイナミクス 186-193
  • 馬渕一誠,渡邊直樹,寺崎朝子,高稲正勝,斧正一郎 (2006) アクチン細胞骨格とアクチン調節タンパク質 実験医学 第24巻 第13号増刊 形と運動を司る細胞のダイナミクス 64-75
  • 渡邊直樹 (2006) アクチンダイナミクス 蛋白質 核酸 酵素 2006年5月号増刊 細胞骨格と接着 第51巻 第6号 522-528
  • 渡邊直樹,東田知陽,三好拓志 (2005) アクチン重合が駆動する細胞運動の謎に挑む単分子イメージング 生物物理 第45巻 第6号 292-296
  • 東田知陽,三好拓志,渡邊直樹 (2005) 単分子スペックル顕微鏡によるアクチン生化学の一分子イメージング 蛋白質 核酸 酵素 第50巻 第11号 1436-1442
  • 渡邊直樹,東田知陽 (2005) mDia1とForminファミリー:アクチン伸長端をサーフィンするプロセッシブキャッパー 生化学 第77巻 第2号 136-140
  • 渡邊直樹 (2005) 単分子スペックル顕微鏡がみせるアクチン重合の細胞内分子キネティクス 日本薬理学雑誌 第125巻 第2号 103-108
  • 渡邊直樹,東田知陽 (2005) アクチン重合駆動モーター“Forminファミリー” 化学と工業 第58巻 第2号 150-152
  • 東田知陽, 渡邊直樹 (2004) アクチン重合端をサーフィンするmDia1 実験医学 第22巻 第15号 2178-2180
  • 渡邊直樹, 東田知陽 (2004) 単分子スペックル顕微鏡法によるアクチン重合ダイナミクス解析 わかる実験医学シリーズ 細胞骨格・運動がわかる 131-135
  • 渡邊直樹, 石崎敏理 (1999) Rhoファミリーのエフェクターの新しい展開 実験医学 第17巻 第7号 824-830
  • 渡邊直樹 (1998) Rho GTPaseの新しい標的分子mDia、Bni1pとformin類似蛋白質ファミリー 生化学 第70巻 第7号 542-548
  • 石崎敏理, 渡邊直樹 (1997) Rho標的蛋白質の同定 バイオマニュアルUPシリーズ「細胞生物学の基礎技術」(羊土社) 第3章 153-160
  • 渡邊直樹,成宮周 (1996) RhoGAPドメインをもつ分子群 実験医学「GTP結合蛋白質」 第14巻 第2号 174-177